Mostrar el registro sencillo del ítem
Detección de Treponema pallidum subespecie pallidum en muestras clínicas para el diagnóstico de Sífilis congénita mediante la utilizaciòn de variantes de la reacciòn en cadena de la polimerasa en tiempo real
dc.contributor.advisor | Pinilla Bermudez, Gladys | |
dc.contributor.author | Barbosa Barrero, Milena Patricia | |
dc.contributor.author | Gonzalez Chaves, Brigete Stephany | |
dc.date.accessioned | 2022-03-04T14:43:29Z | |
dc.date.available | 2022-03-04T14:43:29Z | |
dc.date.issued | 2019 | |
dc.identifier.uri | https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/4765 | |
dc.description.abstract | La sífilis es una enfermedad sistémica de transmisión sexual, sanguínea, y vertical (congénita, perinatal y neonatal) causada por la espiroqueta Treponema pallidum subsp pallidum, que se desarrolla en etapas agudas asintomáticas o sintomáticas y puede llegar a producir infecciones crónicas con secuelas y discapacidades considerables si no es detectada y tratada oportunamente. La sífilis congénita es un importante problema de salud pública en Colombia ya que puede conllevar a padecer una condición con consecuencias graves y un alto costo humano, social y económico para los pacientes. En el presente estudio, por medio de variantes de la reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real (PCR tr y PCR tr-sondaTaqman) se evaluó la presencia del gen TpN47 en muestras clínicas para la identificación de Treponema pallidum subsp pallidum para comparar la sensibilidad y especificidad de estas variantes. De 27 muestras procesadas de sangre total periférica y suero de gestantes y neonatos, sangre de cordón umbilical y líquido cefalorraquídeo, el 48,14% arrojaron resultados positivos para la PCR tr y el 81,48% para PCR tr-Taqman en comparación con la técnica serológica VDRL con una especificidad del 100% para ambas variantes. El límite de detección para la PCR tr y PCR tr-Taqman fue de 4,5 fg y 1,135 fg respectivamente. Se puede concluir que el gen TpN47 es una diana molecular promisoria y la variante PCR tr-Taqman es una herramienta valiosa para el diagnóstico de sífilis congénita que minimiza tanto los falsos negativos como positivos de las técnicas serológicas. | spa |
dc.description.tableofcontents | Objetivos específicos 18 ANTECEDENTES 19 MARCO TEÓRICO 22 1. Generalidades de la Sífilis 22 1.1 Patogenia 22 1.2 Sífilis primaria, secundaria y terciaria 23 1.3 Sífilis gestacional y congénita 26 1.4 Infección fetal 27 1.4.1. Sífilis Congénita Temprana 29 1.4.2. Sífilis Congénita Tardía 29 2. Agente etiológico 31 2.1 Taxonomía 32 2.2 Estructura 33 2.3 Virulencia y Componentes Antigénicos 33 2.4 Genoma 34 2.4.1 Gen TpN47 35 3. Inmunología 35 3.1 Respuesta Inmune 35 3.2 Mecanismo de Evasión 36 4. Epidemiología 37 4.1 Sífilis Congénita 38 5. Diagnóstico 40 5.1 Pruebas directas 41 5.2 Pruebas serológicas 41 5.2.1 Pruebas no treponémicas 42 5.2.2 Pruebas Treponémicas 43 5.3 Pruebas Moleculares 45 5.3.1 Fundamento de la Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) 45 5.3.2 PCR en Tiempo Real (PCR tr) 45 5.3.3 PCR en tiempo real en el diagnóstico de sífilis 47 6. Tratamiento y Prevención 48 METODOLOGÍA 50 7. Tipo de investigación 50 8. Población de estudio 50 8.1 Muestra 50 9. Controles 50 9.1 Control Positivo 50 9.2 Control Negativo 50 9.3 Control Exógeno 50 9.4 Control Endógeno de extracciòn 51 9.5 Control Interno de Amplificación 51 10. Muestras Clínicas 51 11. Extracción de ADN 52 11.1 Control Positivo y Muestras Clínicas 52 11.2 ADN Plasmídico 52 12. PCR Convencional 52 12.1 Titulación del ADN 53 12.2 Titulación de primers 54 12.3 Ensayo de Sensibilidad en PCR convencional 54 13. PCR en Tiempo Real (PCR tr 55 13.1 Curva de Calibración para PCR tr 55 13.2 Ensayo de sensibilidad en PCR tr 56 13.3 Ensayo de especificidad en PCR tr 56 14. PCR en Tiempo Real con Sonda Taqman 47 REMA (PCR tr-Taqman) 57 14.1 Curva de Calibración para PCR tr-Taqman 58 14.2 Ensayo de sensibilidad en PCR tr-Taqman 58 14.3 Ensayo de especificidad en PCR tr-Taqman 59 RESULTADOS 60 15. PCR Convencional 60 15.1 Titulación de ADN 60 15.2 Titulación de los primers TpN47 61 15.3 Ensayo de sensibilidad por PCR convencional 61 16. PCR en Tiempo Real (PCR tr ) 62 16.1 Curva de calibración PCR tr 62 16.2 Ensayo de sensibilidad por PCR tr 65 16.3 Ensayo de especificidad por PCR tr 65 16.3.1 Análisis bioinformático de los primers TpN47 67 16.4 Controles negativos en PCR tr 71 16.5 Control interno de amplificación en PCR tr 71 17. PCR en Tiempo Real con Sonda Taqman (PCR tr Taqman) 72 17.1 Curva de Calibración PCR tr Taqman 72 17.2 Ensayo de sensibilidad PCR tr-Taqman 74 17.3 Ensayo de Especificidad PCR Taqman 74 17.3.1 Análisis bioinformático de la sonda Taqman 47 REMA 76 17.4 Control Negativo en PCR tr-Taqman 79 17.5 Control de amplificación en PCR tr-Taqman 79 18. Valores de Ct 80 19. Muestras Clínicas 81 DISCUSIÓN 87 CONCLUSIONES 97 ANEXOS 100 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 111 | spa |
dc.format.extent | 118p. | spa |
dc.format.mimetype | application/pdf | spa |
dc.language.iso | spa | spa |
dc.publisher | Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca | spa |
dc.rights | Derechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2019 | spa |
dc.rights.uri | https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ | spa |
dc.title | Detección de Treponema pallidum subespecie pallidum en muestras clínicas para el diagnóstico de Sífilis congénita mediante la utilizaciòn de variantes de la reacciòn en cadena de la polimerasa en tiempo real | spa |
dc.type | Trabajo de grado - Pregrado | spa |
dc.description.degreelevel | Pregrado | spa |
dc.description.degreename | Bacteriólogo(a) y Laboratorista Clínico | spa |
dc.identifier.barcode | 58672 | |
dc.publisher.faculty | Facultad de Ciencias de la Salud | spa |
dc.publisher.place | Bogotá D.C | spa |
dc.publisher.program | Bacteriología y Laboratorio Clínico | spa |
dc.relation.references | WHO. Global Prevalence and Incidence of Selected Curable Sexually Transmitted Infections. http://www.who.int/reproductivehealth/publications/rtis/stisestimates/en/index.html [Internet]. 2001 [cited 2018 May 28]; Available from: http://www.who.int/hiv/pub/sti/pub7/en/ | spa |
dc.relation.references | WHO. Infecciones de transmisión sexual. Menendez C, editor. 2016 Feb 26 [cited 2018 May 28];(2). Available from: http://dx.plos.org/10.1371/journal.pmed.1001396 | spa |
dc.relation.references | Giraldo-Ospina B, Henao-Nieto DE, Flórez-Salazar M, Parra-Londoño F, GómezGiraldo EL, Mantilla-Moreno OJ. Prevalencia de sífilis en una población de gestantes de dos comunidades de un municipio de Colombia. Biosalud [Internet]. 2015 [cited 2018 May 28];14(2):9–18. Available from: http://www.scielo.org.co/pdf/biosa/v14n2/v14n2a02.pdf | spa |
dc.relation.references | Vanegas-Castillo N, Cáceres-Buitrago YN, Jaimes-González CA, Ángel-Muller E, Rubio-Romero JA. Tratamiento de la sífilis gestacional y prevención de la sífilis congénita en un hospital público en Bogotá, 2010. Investig Orig Rev Fac Med [Internet]. 2011 [cited 2018 May 28];59(3):167–89. Available from: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0120- 00112011000300002 | spa |
dc.relation.references | Damasceno Casal C.A, Oliveira da silva M., Brasil Costa I., da Cunha Araujo E. de OlCTC. Molecular detection of Treponema pallidum sp. pallidum in blood samples of VDRL-seroreactive women with lethal pregnancy outcomes: a retrospective observational study in northern Brazil. Rev Soc Bras Med Trop [Internet]. 2011 Jul 22 [cited 2018 May 28];44(4):451–6. Available from: http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0037- 86822011000400010&lng=en&tlng=en | spa |
dc.relation.references | Martin IE, Gu W, Yang Y, Tsang RSW. Macrolide Resistance and Molecular Types of Treponema pallidum causing primary syphilis in Shanghai, China. Clin Infect Dis [Internet]. 2009 Aug 15 [cited 2018 May 28];49(4):515–21. Available from: https://academic.oup.com/cid/article-lookup/doi/10.1086/600878 | spa |
dc.relation.references | Grimprel E, Sanchez PJ, Wendel GD, Burstain JM, McCracken GH, Radolf JD, et al. Use of polymerase chain reaction and rabbit infectivity testing to detect Treponema pallidum in amniotic fluid, fetal and neonatal sera, and cerebrospinal fluid. J Clin Microbiol [Internet]. 1991 Aug [cited 2018 May 29];29(8):1711–8. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1761693 | spa |
dc.relation.references | Rodríguez M&, Rodríguez W, Stock RP, Rodríguez SI. Métodos físico-químicos en Biotecnología (2006-II). [cited 2018 May 29]; Available from: http://www.ibt.unam.mx/computo/pdfs/met/realtime_pcr.pdf | spa |
dc.relation.references | T. Dorak. Real-time PCR. Taylor Fr Gr [Internet]. 2006 [cited 2018 May 29]; Available from: http://www.gene-quantification.com/dorak-book-real-time-pcr2006.pdf | spa |
dc.relation.references | Gama A, Carrillo-Casas E, Hernández-Castro R, Vázquez-Aceituno V, ToussaintCaire S, Xicohtencatl-Cortes J, et al. Treponema pallidum ssp. pallidum identification by real-time PCR targetting the polA gene in paraffin-embedded samples positive by immunohistochemistry. Int J STD AIDS [Internet]. 2017 Nov 11 [cited 2018 May 29];28(13):1299–304. Available from: http://journals.sagepub.com/doi/10.1177/0956462417704123 | spa |
dc.relation.references | Sanguineti Diaz A.C. Tafur Davila J.R. ACTUALIZACIÓN EN EL DIAGNÓSTICO DE LA SÍFILIS. Dermatología Peru [Internet]. 2004 [cited 2018 May 29];14(3):190–7. Available from: https://www.researchgate.net/publication/237237932_ACTUALIZACION_EN_EL_ DIAGNOSTICO_DE_LA_SIFILIS | spa |
dc.relation.references | Burstain JM, Grimprel E, Lukehart SA, Norgard M V, Radolf JD. Sensitive detection of Treponema pallidum by using the polymerase chain reaction. J Clin Microbiol [Internet]. 1991 Jan 1 [cited 2018 May 29];29(1):62–9. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1993770 | spa |
dc.relation.references | Grange P., Gressier L ., Dion P., Farhi D. BN et. al. Evaluation of a PCR test for detection of Treponema pallidum in swabs and blood. J Clin Microbiol [Internet]. 2012 Mar 1 [cited 2018 May 29];50(3):546–52. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22219306 | spa |
dc.relation.references | Gayet-Ageron A, Laurent F, Schrenzel J, Charton B, Jimenez-Getaz G, Tangomo M, et al. Performance of the 47-kilodalton membrane protein versus DNA polymerase I genes for detection of Treponema pallidum by PCR in ulcers. J Clin Microbiol [Internet]. 2015 Mar 1 [cited 2018 May 29];53(3):976–80. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25520453 | spa |
dc.relation.references | Castro R., Águas M.j., Batista T., Araújo c., Mansinho K. PF. Detection of Treponema pallidum Sp. pallidum DNA in Cerebrospinal Fluid (CSF) by Two PCR Techniques. J Clin Lab Anal [Internet]. 2016 Sep [cited 2018 May 29];30(5):628– 32. Available from: http://doi.wiley.com/10.1002/jcla.21913 | spa |
dc.relation.references | Pinilla G., Chavarro B., Moreno N., Navarrete J. ML. Determinación de los genes, 16S ADNr, polA, y TpN47, en la detección de Treponema pallidum subsp. pallidum para el diagnóstico de sífilis congénita. NOVA [Internet]. 2015 Dec 30 [cited 2018 May 29];13(24):17–25. Available from: http://unicolmayor.edu.co/publicaciones/index.php/nova/article/view/305/572 | spa |
dc.relation.references | Pinilla G., Campos L., Duran A., Navarrete J. ML. Detección de Treponema pallidum subespecie pallidum para el diagnóstico de sífilis congénita mediante reacción en cadena de la polimerasa anidada. Biomédica [Internet]. 2017 Mar 15 [cited 2018 May 29];38(1):128. Available from: https://www.revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/3740 | spa |
dc.relation.references | Murillo Calderon A. Actualización: Sífilis en Medicina Legal. Med Leg Costa Rica [Internet]. 2011 [cited 2018 May 29];28(1):55–64. Available from: http://www.scielo.sa.cr/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1409- 00152011000100007 | spa |
dc.relation.references | SIFILIS [Internet]. [cited 2018 May 29]. Available from: https://previniendo.files.wordpress.com/2009/05/its-sifilis.pdf | spa |
dc.relation.references | Contreras E., Zuluaga S. O V. Syphilis: the Great Mimicker. Asoc Colomb Infectología [Internet]. 2008 [cited 2018 May 29];12(2):340–7. Available from: http://www.scielo.org.co/pdf/inf/v12n2/v12n2a06.pdf | spa |
dc.relation.references | Garza-Velasco R. G-PI, Manero-Brito S. La sífilis y los principales factores de virulencia de Treponema pallidum. Dep Biol Fac Química UNAM [Internet]. [cited 2018 May 29]; Available from: http://depa.fquim.unam.mx/bacteriologia/pdfs/ART%CDC-Tpallidum.pdf | spa |
dc.relation.references | Martin I., Raymond S.W., Sutherland, K., Tilley P., Read R., Anderson B. et al. Molecular characterization of syphilis in patients in Canada: azithromycin resistance and detection of Treponema pallidum DNA in whole-blood samples versus ulcerative swabs. J Clin Microbiol [Internet]. 2009 Jun [cited 2018 May 29];47(6):1668–73. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19339468 | spa |
dc.relation.references | Burgos P. LE. Treponema pallidum: Estructura Y Antigenicidad. Univ Ciencias Y Soc St Cruz la Sierra [Internet]. 2010 [cited 2018 May 29];1(2):42–4. Available from: http://www.revistasbolivianas.org.bo/scielo.php?pid=S8888- 88882010000100008&script=sci_arttext | spa |
dc.relation.references | Molepo J., Pillay A., Weber B., Morse S. A. HAA. Molecular typing of Treponema pallidum strains from patients with neurosyphilis in Pretoria, South Africa. Sex Transm Infect [Internet]. 2007 Jun [cited 2018 May 29];83(3):189–92. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17244664 | spa |
dc.relation.references | Ryan Kenneth J. (Kenneth James), Ray CG, Sherris JC. Sherris, microbiolog a m dica Internet . 5 . enneth . RM, C. G RG RA M, editors. McGra -Hill; 2011 [cited 2018 May 29]. 489-505 p. Available from: https://docs.google.com/file/d/0B3LwG0yL873sMVY4WThHQi10dlE/edit | spa |
dc.relation.references | De Santis M, De Luca C, Mappa I, Spagnuolo T, Licameli A, Straface G, et al. Syphilis Infection during Pregnancy: Fetal Risks and Clinical Management. Infect Dis Obstet Gynecol [Internet]. 2012 Jul 5 [cited 2018 May 29];2012:1–5. Available from: http://www.hindawi.com/journals/idog/2012/430585/ | spa |
dc.relation.references | Pranatharthi Haran Chandrasekar. Syphilis Clinical Presentation: History, Physical Examination, Complications [Internet]. 2017 [cited 2018 May 29]. Available from: https://emedicine.medscape.com/article/229461-clinical | spa |
dc.relation.references | Eugene W. Nester, Denise G. Anderson, C. Evans Roberts Jr. MTN. Médicina: Microbiología humana [Internet]. 5°. 2007 [cited 2018 May 29]. Available from: https://www.manualmoderno.com/apoyos_electronicos/9707292873/nester1a_ma in.php | spa |
dc.relation.references | Hook E. Epidemiologia Actual de La Sifilis. Lancet [Internet]. 2017 [cited 2018 May 29];389(10078):1550–7. Available from: https://es.scribd.com/document/353897462/Epidemiologia-Actual-de-La-Sifilis | spa |
dc.relation.references | Galban E. BA. Situación De La Sífilis en 20 Países de LatinoAmérica Y El Caribe: Año 2006. DST – J bras Doenças Sex Transm [Internet]. 2007 [cited 2018 May 30];19(3–4):166–72. Available from: http://www.dst.uff.br/revista19-3-2007/9.pdf | spa |
dc.relation.references | Chowdhary N, Rani BK, Mukunda KS, Kiran NK. Early detection of congenital syphilis. J Indian Soc Pedod Prev Dent [Internet]. 2014 [cited 2018 May 30];32(4):333–7. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25231043 | spa |
dc.relation.references | Wahab AA, Ali UK, Mohammad M, Md Monoto EM, Rahman MM. Syphilis in pregnancy. Pakistan J Med Sci [Internet]. 2015 [cited 2018 May 30];31(1):217–9. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25878647 | spa |
dc.relation.references | Singh AE, Levett PN, Fonseca K, Jayaraman GC, Lee BE. Canadian Public Health Laboratory Network laboratory guidelines for congenital syphilis and syphilis screening in pregnant women in Canada. Can J Infect Dis Med Microbiol [Internet]. 2015 [cited 2018 May 30];26(A):23A--28A. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25798162 | spa |
dc.relation.references | Rivera M. Sifilis Congénita. Honduras Pedriatica [Internet]. 2003 [cited 2018 May 30];23(2):1–4. Available from: http://www.bvs.hn/RHP/pdf/2003/pdf/Vol23-2-2003- 5.pdf | spa |
dc.relation.references | Radolf Justin D. Medical Microbiology [Internet]. 4°. Samuel Barón, editor. Medical Microbiology . University of Texas Medical Branch at Galveston, Galveston, Texas: University of Texas Medical Branch at Galveston; 1996 [cited 2018 May 30]. capitulo 36 Treponema. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21413263 | spa |
dc.relation.references | Corrales Ramírez L., Ávila de Navia S. ETS. Bacteriología Teoría Y Práctica. Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, editor. Bogotá- Colombia; 2013. 271-284 p. | spa |
dc.relation.references | Campos Leguizamón L DRA. Detección de Treponema pallidum subsp pallidum para el diagnóstico de sífilis congénita mediante reacción en cadena de la polimerasa anidada. In: Universidad Colegio Mayor de Cundinamrca. BogotáColombia; 2016. | spa |
dc.relation.references | Weinstock G., Hardham J., McLeod M., Sodergren E. NS. The genome of Treponema pallidum: new light on the agent of syphilis. FEM Microbiol Rev [Internet]. 1998;22(4):323–32. Available from: https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1111/j.1574-6976.1998.tb00373.x | spa |
dc.relation.references | Meléndez-Herrada E.,Ramírez M., Sanchez-Dorantes G. CA. Estrategias de investigación para el desarrollo de una vacuna contra la sífilis [Internet]. Vol. 51, Rev Fac Med UNAM. Mexico D.F; 2008 [cited 2018 May 30]. Available from: http://www.medigraphic.com/pdfs/facmed/un-2008/un081e.pdf | spa |
dc.relation.references | Pětrošová H, Posp šilová P, Strouhal M, Čejková D, Zoban ková M, Mikalová L, et al. Resequencing of Treponema pallidum ssp. pallidum Strains Nichols and SS14: Correction of Sequencing Errors Resulted in Increased Separation of Syphilis Treponeme Subclusters. PLoS One [Internet]. 2013 [cited 2018 May 30];8(9):e74319. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24058545 | spa |
dc.relation.references | Liu H, Rodes B, Chen CY, Steiner B. New tests for syphilis: rational design of a PCR method for detection of Treponema pallidum in clinical specimens using unique regions of the DNA polymerase I gene. J Clin Microbiol [Internet]. 2001 May 1 [cited 2018 May 30];39(5):1941–6. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11326018 | spa |
dc.relation.references | Bouis, D. A. PTG, Takashima A. NMV. Dendritic cells phagocytose and are activated by Treponema pallidum. Infect Immun [Internet]. 2001 Jan 1 [cited 2018 May 30];69(1):518–28. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11119545 | spa |
dc.relation.references | Haake DA. Spirochaetal lipoproteins and pathogenesis. Microbiology [Internet]. 2000 Jul [cited 2018 May 30];146 ( Pt 7(Pt 7):1491–504. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10878114 | spa |
dc.relation.references | Banchereau J, Steinman RM. Dendritic cells and the control of immunity. Nature [Internet]. 1998 Mar 19 [cited 2018 May 30];392(6673):245–52. Available from: http://www.nature.com/articles/32588 | spa |
dc.relation.references | Arroll TW, Centurion-Lara A, Lukehart SA, Van Voorhis WC. T-Cell responses to Treponema pallidum subsp. pallidum antigens during the course of experimental syphilis infection. Infect Immun [Internet]. 1999 Sep [cited 2018 May 30];67(9):4757–63. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10456928 | spa |
dc.relation.references | Lewinski MA, Miller JN, Lovett MA, Blanco DR. Correlation of immunity in experimental syphilis with serum-mediated aggregation of Treponema pallidum rare outer membrane proteins. Infect Immun [Internet]. 1999 Jul 1 [cited 2018 May 30];67(7):3631–6. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1037714 | spa |
dc.relation.references | Radolf JD. Treponema pallidum and the quest for outer membrane proteins. Mol Microbiol [Internet]. 1995;16(6):1067–73. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8577243 | spa |
dc.relation.references | Chamorro A. Sífilis y otras Infecciones de Transmisión Sexual (ITS) [Internet]. Cideim.org.co. 2018 [cited 2018 May 30]. Available from: http://www.cideim.org.co/cideim/investigacion/enfoquesdeinvestigacion/sifilis.html | spa |
dc.relation.references | Organización Panamericana de la Salud. Guía clínica para la eliminación de la transmisión maternoinfantil del VIH y de la sífilis congénita en América Latina y el Caribe [Internet]. Raúl González Montero SJS, editor. Organización Panamericana de la salud. Washington D.C; 2010 [cited 2018 May 30]. Available from: https://www.paho.org/clap/index.php?option=com_docman&view=download&cate gory_slug=publicaciones-sifilis&alias=78-guia-clinica-para-la-eliminacion-de-latransmision-maternoinfantil-del-vih-y-de-la-sifilis-congenita&Itemid=219&lang=es | spa |
dc.relation.references | Quijada Bonilla M. et al DLHFM-DMP-GO. Protocolo de Vigilancia en Salud Pública SIFILIS GESTACIONAL Y SIFILIS CONGENITA. Protoc Vigil en Salud Pública [Internet]. 2015 [cited 2018 May 30];3–40. Available from: https://www.minsalud.gov.co/sites/rid/Lists/BibliotecaDigital/RIDE/IA/INS/protocol o-vigilancia-sifilis-gestacional.pdf | spa |
dc.relation.references | Cruz Aconcha A.R. Situación de la Sífilis gestacional y congénita en Colombia, un desafío al Sistema general de Seguridad Social en Salud. Rev Col Obstet y Ginecol [Internet]. 2012 [cited 2018 May 30];63(4):304–7. Available from: http://www.scielo.org.co/pdf/rcog/v63n4/v63n4a01.pdf | spa |
dc.relation.references | Diaz Cruz L.A. Sífilis Gestacional: Un problema de Salud Pública [Internet]. Departamento Obstetricia y Ginecología, Universidad Nacional de Colombia. 2011 [cited 2018 May 30]. Available from: http://www.bdigital.unal.edu.co/28681/2/26439-156392-1-PB.html | spa |
dc.relation.references | Larsen SA, Steiner BM, Rudolph AH. Laboratory diagnosis and interpretation of tests for syphilis [Internet]. Vol. 8, Clinical Microbiology Reviews. 1995 [cited 2018 May 31]. p. 1–21. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC172846/pdf/080001.pdf | spa |
dc.relation.references | López-Hontangas J.L. A-FJ. Sífilis: Una Revisión Actual [Internet]. Servicio de Microbiología Hospital La Fe. Valencia. [cited 2018 May 31]. Available from: https://www.seimc.org/contenidos/ccs/revisionestematicas/serologia/sifilis.pdf | spa |
dc.relation.references | García C P, Grassi C B, Fich S F, Salvo L A, Araya C L, Abarzúa C F, et al. Diagnóstico de la infección por Treponema pallidum en pacientes con sífilis temprana y neurosífilis mediante reacción de la polimerasa en cadena. Rev Chil infectología [Internet]. 2011 Aug [cited 2018 May 31];28(4):310–5. Available from: http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0716- 10182011000500002&lng=en&nrm=iso&tlng=en | spa |
dc.relation.references | Carrada-Bravo T. El diagnóstico de laboratorio de la sífilis. MG Rev Mex Patol Clin [Internet]. 2002 [cited 2018 May 31];50(2):82–96. Available from: http://www.medigraphic.com/pdfs/patol/pt-2003/pt032e.pdf | spa |
dc.relation.references | Peeling RW, Ye H. Diagnostic tools for preventing and managing maternal and congenital syphilis: an overview. Bull World Health Organ [Internet]. 2004 [cited 2018 May 31];82(03):439–46. Available from: http://www.who.int/bulletin/volumes/82/6/439.pdf | spa |
dc.relation.references | Tamay de Dios L, Ibarra C, Velasquillo C. Fundamentos de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y de la PCR en tiempo real. Enferm Infecc Microbiol Clin [Internet]. 2013 [cited 2018 May 31];2(5):70–8. Available from: http://www.medigraphic.com/pdfs/invdis/ir-2013/ir132d.pdf | spa |
dc.relation.references | Mas E., Poza J., Ciriza J., Zaragoza P., Osta R. RC. Fundamentos de la Reacción en Cadena de la Polimerasa. Rev Aquat Univ Zaragoza España [Internet]. 2001 [cited 2018 May 31];15(1). Available from: http://www.revistaaquatic.com/aquatic/html/art1501/basespcr.htm | spa |
dc.relation.references | Costa J. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) a tiempo real. Enferm Infecc Microbiol Clin [Internet]. 2004 Jan [cited 2018 May 31];22(5):299–305. Available from: http://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0213005X0473092X | spa |
dc.relation.references | Palmer HM, Higgins SP, Herring AJ, Kingston MA, Palmer HM. Use of PCR in the diagnosis of early syphilis in the United Kingdom. Sex Transm Infect [Internet]. 2003 [cited 2018 May 31];79:479–83. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1744778/pdf/v079p00479.pdf | spa |
dc.relation.references | Yamamoto M., Lizama L., Valenzuela P., Carrillo J., Insunza A. PP. Diagnóstico Antenatal de Sífilis Congénita por PCR en Líquido Amniótico y sus Posibles Aplicaciones. Rev Chil Obstet Ginecol [Internet]. 2005 [cited 2018 May 31];70(2):87–90. Available from: http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0717- 75262005000200005&lng=en&nrm=iso&tlng=en | spa |
dc.relation.references | Samalvides-Cuba F. B-FC. Sífilis en la Gestación. Rev Peru Ginecol y Obstet [Internet]. 2010 [cited 2018 May 31];56(1):202–8. Available from: http://sisbib.unmsm.edu.pe/bvrevistas/ginecologia/vol56_n3/pdf/a06v56n3.pdf | spa |
dc.relation.references | Caserta M. Sífilis Congénita [Internet]. Manual MSD. 2018 [cited 2018 May 31]. Available from: https://www.msdmanuals.com/es/professional/pediatría/infecciones-en-reciénnacidos/sífilis-congénita | spa |
dc.relation.references | Tipple C, Hanna MOF, Hill S, Daniel J, Goldmeier D, McClure MO, et al. Getting the measure of syphilis: qPCR to better understand early infection. Sex Transm Infect [Internet]. 2011 Oct [cited 2018 Jul 29];87(6):479–85. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21752804 | spa |
dc.relation.references | Gayet-Ageron A, Ninet B, Toutous-Trellu L, Lautenschlager S, Furrer H, Piguet V, et al. Assessment of a real-time PCR test to diagnose syphilis from diverse biological samples. Sex Transm Infect [Internet]. 2009 Aug 1 [cited 2018 Jul 29];85(4):264–9. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19155240 | spa |
dc.relation.references | Sánchez- ara Sánchez A. Nuevas aportaciones a la correlación cl nico molecular de la catarata senil [Internet]. Ediciones Universidad de Salamanca; 2011 [cited 2018 Jul 29]. Available from: https://books.google.com.co/books?id=5NL28L7iJpIC&pg=PA104&lpg=PA104&d q=garantizan+la+especificidad+de+la+detección,+permiten+identificar+polimorfis mos+o+mutaciones+puntuales&source=bl&ots=UsD5Cevrx7&sig=84VDzfKW6T2 uFRet-MiBjjyPFBo&hl=es&sa=X&ved=0ahUKEwj | spa |
dc.relation.references | Chi K-H, Danavall D, Taleo F, Pillay A, Ye T, Nachamkin E, et al. Molecular differentiation of Treponema pallidum subspecies in skin ulceration clinically suspected as yaws in Vanuatu using real-time multiplex PCR and serological methods. Am J Trop Med Hyg [Internet]. 2015 Jan [cited 2018 Jul 29];92(1):134– 8. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25404075 | spa |
dc.relation.references | Heymans R, van der Helm JJ, de Vries HJC, Fennema HSA, Coutinho RA, Bruisten SM. Clinical value of Treponema pallidum real-time PCR for diagnosis of syphilis. J Clin Microbiol [Internet]. 2010 Feb [cited 2018 Jul 29];48(2):497–502. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20007388 | spa |
dc.rights.accessrights | info:eu-repo/semantics/closedAccess | spa |
dc.rights.creativecommons | Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0) | spa |
dc.subject.lemb | Enfermedad | |
dc.subject.lemb | Infecciones de transmisión sexual | |
dc.subject.lemb | Organización Mundial de la Salud | |
dc.subject.proposal | Sífilis | spa |
dc.subject.proposal | Sífilis congénita | spa |
dc.subject.proposal | Treponema pallidum subsp | spa |
dc.subject.proposal | Pallidum | spa |
dc.subject.proposal | PCR | spa |
dc.subject.proposal | TpN47 | spa |
dc.type.coar | http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f | spa |
dc.type.coarversion | http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 | spa |
dc.type.content | Text | spa |
dc.type.driver | info:eu-repo/semantics/bachelorThesis | spa |
dc.type.redcol | https://purl.org/redcol/resource_type/TP | spa |
dc.type.version | info:eu-repo/semantics/publishedVersion | spa |
dc.rights.coar | http://purl.org/coar/access_right/c_14cb | spa |