dc.contributor.advisor | Pinilla Bermudez, Gladys | |
dc.contributor.author | Barbosa Barrero, Milena Patricia | |
dc.contributor.author | Gonzalez Chaves, Brigete Stephany | |
dc.date.accessioned | 2022-03-04T14:43:29Z | |
dc.date.available | 2022-03-04T14:43:29Z | |
dc.date.issued | 2019 | |
dc.identifier.uri | https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/4765 | |
dc.description.abstract | La sífilis es una enfermedad sistémica de transmisión sexual, sanguínea, y vertical
(congénita, perinatal y neonatal) causada por la espiroqueta Treponema pallidum subsp
pallidum, que se desarrolla en etapas agudas asintomáticas o sintomáticas y puede
llegar a producir infecciones crónicas con secuelas y discapacidades considerables si
no es detectada y tratada oportunamente. La sífilis congénita es un importante
problema de salud pública en Colombia ya que puede conllevar a padecer una
condición con consecuencias graves y un alto costo humano, social y económico para
los pacientes.
En el presente estudio, por medio de variantes de la reacción en cadena de la
polimerasa en tiempo real (PCR tr y PCR tr-sondaTaqman) se evaluó la presencia del
gen TpN47 en muestras clínicas para la identificación de Treponema pallidum subsp
pallidum para comparar la sensibilidad y especificidad de estas variantes.
De 27 muestras procesadas de sangre total periférica y suero de gestantes y neonatos,
sangre de cordón umbilical y líquido cefalorraquídeo, el 48,14% arrojaron resultados
positivos para la PCR tr y el 81,48% para PCR tr-Taqman en comparación con la
técnica serológica VDRL con una especificidad del 100% para ambas variantes. El
límite de detección para la PCR tr y PCR tr-Taqman fue de 4,5 fg y 1,135 fg
respectivamente.
Se puede concluir que el gen TpN47 es una diana molecular promisoria y la variante
PCR tr-Taqman es una herramienta valiosa para el diagnóstico de sífilis congénita que
minimiza tanto los falsos negativos como positivos de las técnicas serológicas. | spa |
dc.description.tableofcontents | Objetivos específicos 18
ANTECEDENTES 19
MARCO TEÓRICO 22
1. Generalidades de la Sífilis 22
1.1 Patogenia 22
1.2 Sífilis primaria, secundaria y terciaria 23
1.3 Sífilis gestacional y congénita 26
1.4 Infección fetal 27
1.4.1. Sífilis Congénita Temprana 29
1.4.2. Sífilis Congénita Tardía 29
2. Agente etiológico 31
2.1 Taxonomía 32
2.2 Estructura 33
2.3 Virulencia y Componentes Antigénicos 33
2.4 Genoma 34
2.4.1 Gen TpN47 35
3. Inmunología 35
3.1 Respuesta Inmune 35
3.2 Mecanismo de Evasión 36
4. Epidemiología 37
4.1 Sífilis Congénita 38
5. Diagnóstico 40
5.1 Pruebas directas 41
5.2 Pruebas serológicas 41
5.2.1 Pruebas no treponémicas 42
5.2.2 Pruebas Treponémicas 43
5.3 Pruebas Moleculares 45
5.3.1 Fundamento de la Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) 45
5.3.2 PCR en Tiempo Real (PCR tr) 45
5.3.3 PCR en tiempo real en el diagnóstico de sífilis 47
6. Tratamiento y Prevención 48
METODOLOGÍA 50
7. Tipo de investigación 50
8. Población de estudio 50
8.1 Muestra 50
9. Controles 50
9.1 Control Positivo 50
9.2 Control Negativo 50
9.3 Control Exógeno 50
9.4 Control Endógeno de extracciòn 51
9.5 Control Interno de Amplificación 51
10. Muestras Clínicas 51
11. Extracción de ADN 52
11.1 Control Positivo y Muestras Clínicas 52
11.2 ADN Plasmídico 52
12. PCR Convencional 52
12.1 Titulación del ADN 53
12.2 Titulación de primers 54
12.3 Ensayo de Sensibilidad en PCR convencional 54
13. PCR en Tiempo Real (PCR tr 55
13.1 Curva de Calibración para PCR tr 55
13.2 Ensayo de sensibilidad en PCR tr 56
13.3 Ensayo de especificidad en PCR tr 56
14. PCR en Tiempo Real con Sonda Taqman 47 REMA (PCR tr-Taqman) 57
14.1 Curva de Calibración para PCR tr-Taqman 58
14.2 Ensayo de sensibilidad en PCR tr-Taqman 58
14.3 Ensayo de especificidad en PCR tr-Taqman 59
RESULTADOS 60
15. PCR Convencional 60
15.1 Titulación de ADN 60
15.2 Titulación de los primers TpN47 61
15.3 Ensayo de sensibilidad por PCR convencional 61
16. PCR en Tiempo Real (PCR tr ) 62
16.1 Curva de calibración PCR tr 62
16.2 Ensayo de sensibilidad por PCR tr 65
16.3 Ensayo de especificidad por PCR tr 65
16.3.1 Análisis bioinformático de los primers TpN47 67
16.4 Controles negativos en PCR tr 71
16.5 Control interno de amplificación en PCR tr 71
17. PCR en Tiempo Real con Sonda Taqman (PCR tr Taqman) 72
17.1 Curva de Calibración PCR tr Taqman 72
17.2 Ensayo de sensibilidad PCR tr-Taqman 74
17.3 Ensayo de Especificidad PCR Taqman 74
17.3.1 Análisis bioinformático de la sonda Taqman 47 REMA 76
17.4 Control Negativo en PCR tr-Taqman 79
17.5 Control de amplificación en PCR tr-Taqman 79
18. Valores de Ct 80
19. Muestras Clínicas 81
DISCUSIÓN 87
CONCLUSIONES 97
ANEXOS 100
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 111 | spa |
dc.format.extent | 118p. | spa |
dc.format.mimetype | application/pdf | spa |
dc.language.iso | spa | spa |
dc.publisher | Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca | spa |
dc.rights | Derechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2019 | spa |
dc.rights.uri | https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ | spa |
dc.title | Detección de Treponema pallidum subespecie pallidum en muestras clínicas para el diagnóstico de Sífilis congénita mediante la utilizaciòn de variantes de la reacciòn en cadena de la polimerasa en tiempo real | spa |
dc.type | Trabajo de grado - Pregrado | spa |
dc.description.degreelevel | Pregrado | spa |
dc.description.degreename | Bacteriólogo(a) y Laboratorista Clínico | spa |
dc.identifier.barcode | 58672 | |
dc.publisher.faculty | Facultad de Ciencias de la Salud | spa |
dc.publisher.place | Bogotá D.C | spa |
dc.publisher.program | Bacteriología y Laboratorio Clínico | spa |
dc.relation.references | WHO. Global Prevalence and Incidence of Selected Curable Sexually
Transmitted Infections.
http://www.who.int/reproductivehealth/publications/rtis/stisestimates/en/index.html
[Internet]. 2001 [cited 2018 May 28]; Available from:
http://www.who.int/hiv/pub/sti/pub7/en/ | spa |
dc.relation.references | WHO. Infecciones de transmisión sexual. Menendez C, editor. 2016 Feb 26 [cited
2018 May 28];(2). Available from:
http://dx.plos.org/10.1371/journal.pmed.1001396 | spa |
dc.relation.references | Giraldo-Ospina B, Henao-Nieto DE, Flórez-Salazar M, Parra-Londoño F, GómezGiraldo EL, Mantilla-Moreno OJ. Prevalencia de sífilis en una población de
gestantes de dos comunidades de un municipio de Colombia. Biosalud [Internet].
2015 [cited 2018 May 28];14(2):9–18. Available from:
http://www.scielo.org.co/pdf/biosa/v14n2/v14n2a02.pdf | spa |
dc.relation.references | Vanegas-Castillo N, Cáceres-Buitrago YN, Jaimes-González CA, Ángel-Muller E,
Rubio-Romero JA. Tratamiento de la sífilis gestacional y prevención de la sífilis
congénita en un hospital público en Bogotá, 2010. Investig Orig Rev Fac Med
[Internet]. 2011 [cited 2018 May 28];59(3):167–89. Available from:
http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0120-
00112011000300002 | spa |
dc.relation.references | Damasceno Casal C.A, Oliveira da silva M., Brasil Costa I., da Cunha Araujo E.
de OlCTC. Molecular detection of Treponema pallidum sp. pallidum in blood
samples of VDRL-seroreactive women with lethal pregnancy outcomes: a
retrospective observational study in northern Brazil. Rev Soc Bras Med Trop
[Internet]. 2011 Jul 22 [cited 2018 May 28];44(4):451–6. Available from:
http://www.scielo.br/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0037-
86822011000400010&lng=en&tlng=en | spa |
dc.relation.references | Martin IE, Gu W, Yang Y, Tsang RSW. Macrolide Resistance and Molecular
Types of Treponema pallidum causing primary syphilis in Shanghai, China. Clin
Infect Dis [Internet]. 2009 Aug 15 [cited 2018 May 28];49(4):515–21. Available
from: https://academic.oup.com/cid/article-lookup/doi/10.1086/600878 | spa |
dc.relation.references | Grimprel E, Sanchez PJ, Wendel GD, Burstain JM, McCracken GH, Radolf JD, et
al. Use of polymerase chain reaction and rabbit infectivity testing to detect
Treponema pallidum in amniotic fluid, fetal and neonatal sera, and cerebrospinal
fluid. J Clin Microbiol [Internet]. 1991 Aug [cited 2018 May 29];29(8):1711–8.
Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1761693 | spa |
dc.relation.references | Rodríguez M&, Rodríguez W, Stock RP, Rodríguez SI. Métodos físico-químicos
en Biotecnología (2006-II). [cited 2018 May 29]; Available from:
http://www.ibt.unam.mx/computo/pdfs/met/realtime_pcr.pdf | spa |
dc.relation.references | T. Dorak. Real-time PCR. Taylor Fr Gr [Internet]. 2006 [cited 2018 May 29];
Available from: http://www.gene-quantification.com/dorak-book-real-time-pcr2006.pdf | spa |
dc.relation.references | Gama A, Carrillo-Casas E, Hernández-Castro R, Vázquez-Aceituno V, ToussaintCaire S, Xicohtencatl-Cortes J, et al. Treponema pallidum ssp. pallidum
identification by real-time PCR targetting the polA gene in paraffin-embedded
samples positive by immunohistochemistry. Int J STD AIDS [Internet]. 2017 Nov
11 [cited 2018 May 29];28(13):1299–304. Available from:
http://journals.sagepub.com/doi/10.1177/0956462417704123 | spa |
dc.relation.references | Sanguineti Diaz A.C. Tafur Davila J.R. ACTUALIZACIÓN EN EL DIAGNÓSTICO
DE LA SÍFILIS. Dermatología Peru [Internet]. 2004 [cited 2018 May
29];14(3):190–7. Available from:
https://www.researchgate.net/publication/237237932_ACTUALIZACION_EN_EL_
DIAGNOSTICO_DE_LA_SIFILIS | spa |
dc.relation.references | Burstain JM, Grimprel E, Lukehart SA, Norgard M V, Radolf JD. Sensitive
detection of Treponema pallidum by using the polymerase chain reaction. J Clin
Microbiol [Internet]. 1991 Jan 1 [cited 2018 May 29];29(1):62–9. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1993770 | spa |
dc.relation.references | Grange P., Gressier L ., Dion P., Farhi D. BN et. al. Evaluation of a PCR test for
detection of Treponema pallidum in swabs and blood. J Clin Microbiol [Internet].
2012 Mar 1 [cited 2018 May 29];50(3):546–52. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/22219306 | spa |
dc.relation.references | Gayet-Ageron A, Laurent F, Schrenzel J, Charton B, Jimenez-Getaz G, Tangomo
M, et al. Performance of the 47-kilodalton membrane protein versus DNA
polymerase I genes for detection of Treponema pallidum by PCR in ulcers. J Clin
Microbiol [Internet]. 2015 Mar 1 [cited 2018 May 29];53(3):976–80. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25520453 | spa |
dc.relation.references | Castro R., Águas M.j., Batista T., Araújo c., Mansinho K. PF. Detection of
Treponema pallidum Sp. pallidum DNA in Cerebrospinal Fluid (CSF) by Two PCR
Techniques. J Clin Lab Anal [Internet]. 2016 Sep [cited 2018 May 29];30(5):628–
32. Available from: http://doi.wiley.com/10.1002/jcla.21913 | spa |
dc.relation.references | Pinilla G., Chavarro B., Moreno N., Navarrete J. ML. Determinación de los genes,
16S ADNr, polA, y TpN47, en la detección de Treponema pallidum subsp.
pallidum para el diagnóstico de sífilis congénita. NOVA [Internet]. 2015 Dec 30
[cited 2018 May 29];13(24):17–25. Available from:
http://unicolmayor.edu.co/publicaciones/index.php/nova/article/view/305/572 | spa |
dc.relation.references | Pinilla G., Campos L., Duran A., Navarrete J. ML. Detección de Treponema
pallidum subespecie pallidum para el diagnóstico de sífilis congénita mediante
reacción en cadena de la polimerasa anidada. Biomédica [Internet]. 2017 Mar 15
[cited 2018 May 29];38(1):128. Available from:
https://www.revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/3740 | spa |
dc.relation.references | Murillo Calderon A. Actualización: Sífilis en Medicina Legal. Med Leg Costa Rica
[Internet]. 2011 [cited 2018 May 29];28(1):55–64. Available from:
http://www.scielo.sa.cr/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1409-
00152011000100007 | spa |
dc.relation.references | SIFILIS [Internet]. [cited 2018 May 29]. Available from:
https://previniendo.files.wordpress.com/2009/05/its-sifilis.pdf | spa |
dc.relation.references | Contreras E., Zuluaga S. O V. Syphilis: the Great Mimicker. Asoc Colomb
Infectología [Internet]. 2008 [cited 2018 May 29];12(2):340–7. Available from:
http://www.scielo.org.co/pdf/inf/v12n2/v12n2a06.pdf | spa |
dc.relation.references | Garza-Velasco R. G-PI, Manero-Brito S. La sífilis y los principales factores de
virulencia de Treponema pallidum. Dep Biol Fac Química UNAM [Internet]. [cited
2018 May 29]; Available from:
http://depa.fquim.unam.mx/bacteriologia/pdfs/ART%CDC-Tpallidum.pdf | spa |
dc.relation.references | Martin I., Raymond S.W., Sutherland, K., Tilley P., Read R., Anderson B. et al.
Molecular characterization of syphilis in patients in Canada: azithromycin
resistance and detection of Treponema pallidum DNA in whole-blood samples
versus ulcerative swabs. J Clin Microbiol [Internet]. 2009 Jun [cited 2018 May
29];47(6):1668–73. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19339468 | spa |
dc.relation.references | Burgos P. LE. Treponema pallidum: Estructura Y Antigenicidad. Univ Ciencias Y
Soc St Cruz la Sierra [Internet]. 2010 [cited 2018 May 29];1(2):42–4. Available
from: http://www.revistasbolivianas.org.bo/scielo.php?pid=S8888-
88882010000100008&script=sci_arttext | spa |
dc.relation.references | Molepo J., Pillay A., Weber B., Morse S. A. HAA. Molecular typing of Treponema
pallidum strains from patients with neurosyphilis in Pretoria, South Africa. Sex
Transm Infect [Internet]. 2007 Jun [cited 2018 May 29];83(3):189–92. Available
from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17244664 | spa |
dc.relation.references | Ryan Kenneth J. (Kenneth James), Ray CG, Sherris JC. Sherris, microbiolog a
m dica Internet . 5 . enneth . RM, C. G RG RA M, editors. McGra -Hill;
2011 [cited 2018 May 29]. 489-505 p. Available from:
https://docs.google.com/file/d/0B3LwG0yL873sMVY4WThHQi10dlE/edit | spa |
dc.relation.references | De Santis M, De Luca C, Mappa I, Spagnuolo T, Licameli A, Straface G, et al.
Syphilis Infection during Pregnancy: Fetal Risks and Clinical Management. Infect
Dis Obstet Gynecol [Internet]. 2012 Jul 5 [cited 2018 May 29];2012:1–5. Available
from: http://www.hindawi.com/journals/idog/2012/430585/ | spa |
dc.relation.references | Pranatharthi Haran Chandrasekar. Syphilis Clinical Presentation: History,
Physical Examination, Complications [Internet]. 2017 [cited 2018 May 29].
Available from: https://emedicine.medscape.com/article/229461-clinical | spa |
dc.relation.references | Eugene W. Nester, Denise G. Anderson, C. Evans Roberts Jr. MTN. Médicina:
Microbiología humana [Internet]. 5°. 2007 [cited 2018 May 29]. Available from:
https://www.manualmoderno.com/apoyos_electronicos/9707292873/nester1a_ma
in.php | spa |
dc.relation.references | Hook E. Epidemiologia Actual de La Sifilis. Lancet [Internet]. 2017 [cited 2018
May 29];389(10078):1550–7. Available from:
https://es.scribd.com/document/353897462/Epidemiologia-Actual-de-La-Sifilis | spa |
dc.relation.references | Galban E. BA. Situación De La Sífilis en 20 Países de LatinoAmérica Y El Caribe:
Año 2006. DST – J bras Doenças Sex Transm [Internet]. 2007 [cited 2018 May
30];19(3–4):166–72. Available from: http://www.dst.uff.br/revista19-3-2007/9.pdf | spa |
dc.relation.references | Chowdhary N, Rani BK, Mukunda KS, Kiran NK. Early detection of congenital
syphilis. J Indian Soc Pedod Prev Dent [Internet]. 2014 [cited 2018 May
30];32(4):333–7. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25231043 | spa |
dc.relation.references | Wahab AA, Ali UK, Mohammad M, Md Monoto EM, Rahman MM. Syphilis in
pregnancy. Pakistan J Med Sci [Internet]. 2015 [cited 2018 May 30];31(1):217–9.
Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25878647 | spa |
dc.relation.references | Singh AE, Levett PN, Fonseca K, Jayaraman GC, Lee BE. Canadian Public
Health Laboratory Network laboratory guidelines for congenital syphilis and
syphilis screening in pregnant women in Canada. Can J Infect Dis Med Microbiol
[Internet]. 2015 [cited 2018 May 30];26(A):23A--28A. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25798162 | spa |
dc.relation.references | Rivera M. Sifilis Congénita. Honduras Pedriatica [Internet]. 2003 [cited 2018 May
30];23(2):1–4. Available from: http://www.bvs.hn/RHP/pdf/2003/pdf/Vol23-2-2003-
5.pdf | spa |
dc.relation.references | Radolf Justin D. Medical Microbiology [Internet]. 4°. Samuel Barón, editor.
Medical Microbiology . University of Texas Medical Branch at Galveston,
Galveston, Texas: University of Texas Medical Branch at Galveston; 1996 [cited
2018 May 30]. capitulo 36 Treponema. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21413263 | spa |
dc.relation.references | Corrales Ramírez L., Ávila de Navia S. ETS. Bacteriología Teoría Y Práctica.
Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, editor. Bogotá- Colombia; 2013.
271-284 p. | spa |
dc.relation.references | Campos Leguizamón L DRA. Detección de Treponema pallidum subsp pallidum
para el diagnóstico de sífilis congénita mediante reacción en cadena de la
polimerasa anidada. In: Universidad Colegio Mayor de Cundinamrca. BogotáColombia; 2016. | spa |
dc.relation.references | Weinstock G., Hardham J., McLeod M., Sodergren E. NS. The genome of
Treponema pallidum: new light on the agent of syphilis. FEM Microbiol Rev
[Internet]. 1998;22(4):323–32. Available from:
https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1111/j.1574-6976.1998.tb00373.x | spa |
dc.relation.references | Meléndez-Herrada E.,Ramírez M., Sanchez-Dorantes G. CA. Estrategias de
investigación para el desarrollo de una vacuna contra la sífilis [Internet]. Vol. 51,
Rev Fac Med UNAM. Mexico D.F; 2008 [cited 2018 May 30]. Available from:
http://www.medigraphic.com/pdfs/facmed/un-2008/un081e.pdf | spa |
dc.relation.references | Pětrošová H, Posp šilová P, Strouhal M, Čejková D, Zoban ková M, Mikalová L, et
al. Resequencing of Treponema pallidum ssp. pallidum Strains Nichols and SS14:
Correction of Sequencing Errors Resulted in Increased Separation of Syphilis
Treponeme Subclusters. PLoS One [Internet]. 2013 [cited 2018 May
30];8(9):e74319. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/24058545 | spa |
dc.relation.references | Liu H, Rodes B, Chen CY, Steiner B. New tests for syphilis: rational design of a
PCR method for detection of Treponema pallidum in clinical specimens using
unique regions of the DNA polymerase I gene. J Clin Microbiol [Internet]. 2001
May 1 [cited 2018 May 30];39(5):1941–6. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11326018 | spa |
dc.relation.references | Bouis, D. A. PTG, Takashima A. NMV. Dendritic cells phagocytose and are
activated by Treponema pallidum. Infect Immun [Internet]. 2001 Jan 1 [cited 2018
May 30];69(1):518–28. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/11119545 | spa |
dc.relation.references | Haake DA. Spirochaetal lipoproteins and pathogenesis. Microbiology [Internet].
2000 Jul [cited 2018 May 30];146 ( Pt 7(Pt 7):1491–504. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10878114 | spa |
dc.relation.references | Banchereau J, Steinman RM. Dendritic cells and the control of immunity. Nature
[Internet]. 1998 Mar 19 [cited 2018 May 30];392(6673):245–52. Available from:
http://www.nature.com/articles/32588 | spa |
dc.relation.references | Arroll TW, Centurion-Lara A, Lukehart SA, Van Voorhis WC. T-Cell responses to
Treponema pallidum subsp. pallidum antigens during the course of experimental
syphilis infection. Infect Immun [Internet]. 1999 Sep [cited 2018 May
30];67(9):4757–63. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10456928 | spa |
dc.relation.references | Lewinski MA, Miller JN, Lovett MA, Blanco DR. Correlation of immunity in
experimental syphilis with serum-mediated aggregation of Treponema pallidum
rare outer membrane proteins. Infect Immun [Internet]. 1999 Jul 1 [cited 2018 May
30];67(7):3631–6. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1037714 | spa |
dc.relation.references | Radolf JD. Treponema pallidum and the quest for outer membrane proteins. Mol
Microbiol [Internet]. 1995;16(6):1067–73. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8577243 | spa |
dc.relation.references | Chamorro A. Sífilis y otras Infecciones de Transmisión Sexual (ITS) [Internet].
Cideim.org.co. 2018 [cited 2018 May 30]. Available from:
http://www.cideim.org.co/cideim/investigacion/enfoquesdeinvestigacion/sifilis.html | spa |
dc.relation.references | Organización Panamericana de la Salud. Guía clínica para la eliminación de la
transmisión maternoinfantil del VIH y de la sífilis congénita en América Latina y el
Caribe [Internet]. Raúl González Montero SJS, editor. Organización
Panamericana de la salud. Washington D.C; 2010 [cited 2018 May 30]. Available
from:
https://www.paho.org/clap/index.php?option=com_docman&view=download&cate
gory_slug=publicaciones-sifilis&alias=78-guia-clinica-para-la-eliminacion-de-latransmision-maternoinfantil-del-vih-y-de-la-sifilis-congenita&Itemid=219&lang=es | spa |
dc.relation.references | Quijada Bonilla M. et al DLHFM-DMP-GO. Protocolo de Vigilancia en Salud
Pública SIFILIS GESTACIONAL Y SIFILIS CONGENITA. Protoc Vigil en Salud
Pública [Internet]. 2015 [cited 2018 May 30];3–40. Available from:
https://www.minsalud.gov.co/sites/rid/Lists/BibliotecaDigital/RIDE/IA/INS/protocol
o-vigilancia-sifilis-gestacional.pdf | spa |
dc.relation.references | Cruz Aconcha A.R. Situación de la Sífilis gestacional y congénita en Colombia, un
desafío al Sistema general de Seguridad Social en Salud. Rev Col Obstet y
Ginecol [Internet]. 2012 [cited 2018 May 30];63(4):304–7. Available from:
http://www.scielo.org.co/pdf/rcog/v63n4/v63n4a01.pdf | spa |
dc.relation.references | Diaz Cruz L.A. Sífilis Gestacional: Un problema de Salud Pública [Internet].
Departamento Obstetricia y Ginecología, Universidad Nacional de Colombia.
2011 [cited 2018 May 30]. Available from:
http://www.bdigital.unal.edu.co/28681/2/26439-156392-1-PB.html | spa |
dc.relation.references | Larsen SA, Steiner BM, Rudolph AH. Laboratory diagnosis and interpretation of
tests for syphilis [Internet]. Vol. 8, Clinical Microbiology Reviews. 1995 [cited 2018
May 31]. p. 1–21. Available from:
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC172846/pdf/080001.pdf | spa |
dc.relation.references | López-Hontangas J.L. A-FJ. Sífilis: Una Revisión Actual [Internet]. Servicio de
Microbiología Hospital La Fe. Valencia. [cited 2018 May 31]. Available from:
https://www.seimc.org/contenidos/ccs/revisionestematicas/serologia/sifilis.pdf | spa |
dc.relation.references | García C P, Grassi C B, Fich S F, Salvo L A, Araya C L, Abarzúa C F, et al.
Diagnóstico de la infección por Treponema pallidum en pacientes con sífilis
temprana y neurosífilis mediante reacción de la polimerasa en cadena. Rev Chil
infectología [Internet]. 2011 Aug [cited 2018 May 31];28(4):310–5. Available from:
http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0716-
10182011000500002&lng=en&nrm=iso&tlng=en | spa |
dc.relation.references | Carrada-Bravo T. El diagnóstico de laboratorio de la sífilis. MG Rev Mex Patol
Clin [Internet]. 2002 [cited 2018 May 31];50(2):82–96. Available from:
http://www.medigraphic.com/pdfs/patol/pt-2003/pt032e.pdf | spa |
dc.relation.references | Peeling RW, Ye H. Diagnostic tools for preventing and managing maternal and
congenital syphilis: an overview. Bull World Health Organ [Internet]. 2004 [cited
2018 May 31];82(03):439–46. Available from:
http://www.who.int/bulletin/volumes/82/6/439.pdf | spa |
dc.relation.references | Tamay de Dios L, Ibarra C, Velasquillo C. Fundamentos de la reacción en cadena
de la polimerasa (PCR) y de la PCR en tiempo real. Enferm Infecc Microbiol Clin
[Internet]. 2013 [cited 2018 May 31];2(5):70–8. Available from:
http://www.medigraphic.com/pdfs/invdis/ir-2013/ir132d.pdf | spa |
dc.relation.references | Mas E., Poza J., Ciriza J., Zaragoza P., Osta R. RC. Fundamentos de la
Reacción en Cadena de la Polimerasa. Rev Aquat Univ Zaragoza España
[Internet]. 2001 [cited 2018 May 31];15(1). Available from:
http://www.revistaaquatic.com/aquatic/html/art1501/basespcr.htm | spa |
dc.relation.references | Costa J. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) a tiempo real. Enferm
Infecc Microbiol Clin [Internet]. 2004 Jan [cited 2018 May 31];22(5):299–305.
Available from: http://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0213005X0473092X | spa |
dc.relation.references | Palmer HM, Higgins SP, Herring AJ, Kingston MA, Palmer HM. Use of PCR in the
diagnosis of early syphilis in the United Kingdom. Sex Transm Infect [Internet].
2003 [cited 2018 May 31];79:479–83. Available from:
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1744778/pdf/v079p00479.pdf | spa |
dc.relation.references | Yamamoto M., Lizama L., Valenzuela P., Carrillo J., Insunza A. PP. Diagnóstico
Antenatal de Sífilis Congénita por PCR en Líquido Amniótico y sus Posibles
Aplicaciones. Rev Chil Obstet Ginecol [Internet]. 2005 [cited 2018 May
31];70(2):87–90. Available from:
http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0717-
75262005000200005&lng=en&nrm=iso&tlng=en | spa |
dc.relation.references | Samalvides-Cuba F. B-FC. Sífilis en la Gestación. Rev Peru Ginecol y Obstet
[Internet]. 2010 [cited 2018 May 31];56(1):202–8. Available from:
http://sisbib.unmsm.edu.pe/bvrevistas/ginecologia/vol56_n3/pdf/a06v56n3.pdf | spa |
dc.relation.references | Caserta M. Sífilis Congénita [Internet]. Manual MSD. 2018 [cited 2018 May 31].
Available from:
https://www.msdmanuals.com/es/professional/pediatría/infecciones-en-reciénnacidos/sífilis-congénita | spa |
dc.relation.references | Tipple C, Hanna MOF, Hill S, Daniel J, Goldmeier D, McClure MO, et al. Getting
the measure of syphilis: qPCR to better understand early infection. Sex Transm
Infect [Internet]. 2011 Oct [cited 2018 Jul 29];87(6):479–85. Available from:
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/21752804 | spa |
dc.relation.references | Gayet-Ageron A, Ninet B, Toutous-Trellu L, Lautenschlager S, Furrer H, Piguet V,
et al. Assessment of a real-time PCR test to diagnose syphilis from diverse
biological samples. Sex Transm Infect [Internet]. 2009 Aug 1 [cited 2018 Jul
29];85(4):264–9. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19155240 | spa |
dc.relation.references | Sánchez- ara Sánchez A. Nuevas aportaciones a la correlación cl nico molecular
de la catarata senil [Internet]. Ediciones Universidad de Salamanca; 2011 [cited
2018 Jul 29]. Available from:
https://books.google.com.co/books?id=5NL28L7iJpIC&pg=PA104&lpg=PA104&d
q=garantizan+la+especificidad+de+la+detección,+permiten+identificar+polimorfis
mos+o+mutaciones+puntuales&source=bl&ots=UsD5Cevrx7&sig=84VDzfKW6T2
uFRet-MiBjjyPFBo&hl=es&sa=X&ved=0ahUKEwj | spa |
dc.relation.references | Chi K-H, Danavall D, Taleo F, Pillay A, Ye T, Nachamkin E, et al. Molecular
differentiation of Treponema pallidum subspecies in skin ulceration clinically
suspected as yaws in Vanuatu using real-time multiplex PCR and serological
methods. Am J Trop Med Hyg [Internet]. 2015 Jan [cited 2018 Jul 29];92(1):134–
8. Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25404075 | spa |
dc.relation.references | Heymans R, van der Helm JJ, de Vries HJC, Fennema HSA, Coutinho RA,
Bruisten SM. Clinical value of Treponema pallidum real-time PCR for diagnosis of
syphilis. J Clin Microbiol [Internet]. 2010 Feb [cited 2018 Jul 29];48(2):497–502.
Available from: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20007388 | spa |
dc.rights.accessrights | info:eu-repo/semantics/closedAccess | spa |
dc.rights.creativecommons | Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0) | spa |
dc.subject.lemb | Enfermedad | |
dc.subject.lemb | Infecciones de transmisión sexual | |
dc.subject.lemb | Organización Mundial de la Salud | |
dc.subject.proposal | Sífilis | spa |
dc.subject.proposal | Sífilis congénita | spa |
dc.subject.proposal | Treponema pallidum subsp | spa |
dc.subject.proposal | Pallidum | spa |
dc.subject.proposal | PCR | spa |
dc.subject.proposal | TpN47 | spa |
dc.type.coar | http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f | spa |
dc.type.coarversion | http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 | spa |
dc.type.content | Text | spa |
dc.type.driver | info:eu-repo/semantics/bachelorThesis | spa |
dc.type.redcol | https://purl.org/redcol/resource_type/TP | spa |
dc.type.version | info:eu-repo/semantics/publishedVersion | spa |
dc.rights.coar | http://purl.org/coar/access_right/c_14cb | spa |