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Aislamiento y selección de bacterias Entomopatógenas como alternativa de control biológico sobre larvas de la familia Scarabaeidae: orden coleóptera

dc.contributor.advisorPosada Buitrago, Martha Lucía
dc.contributor.authorBeltrán Plaza, Melisa Yineth
dc.contributor.authorCuevas Moreno, Diana Paola
dc.date.accessioned2022-03-02T21:39:59Z
dc.date.available2022-03-02T21:39:59Z
dc.date.issued2019
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/4757
dc.description.abstractLa agricultura es la principal actividad económica en Colombia. Debido a los aspectos geográficos y otras características en el país, existen variedades de clima y microclimas que favorecen la vida de organismos plagas que pudiesen afectar el desempeño y actividad de la producción agrícola, entre ellos, los insectos de la familia Scarabaeidae: Pleurosticti, caracterizados por su voracidad y su amplia distribución. Como alternativa al uso descontrolado de plaguicidas y productos tóxicos se buscan estrategias amigables con el ambiente como el control biológico. El objetivo principal de este trabajo fué seleccionar bacterias entomopatógenas como alternativa para el control de larvas de la familia Scarabaeidae del orden Coleóptera, conocidas en Colombia con el nombre de chisas, mojojoys, y/o gallina ciega, considerados como el grupo de seres vivos más diversificados en el ambiente terrestre o aéreo. La metodología se desarrolló en seis fases: recolección, monitoreo de larvas y aislamiento de posibles bacterias entomopatógenas, el montaje de bioensayos y posterior cálculo de porcentaje de mortalidad e identificación molecular de los aislados bacterianos. Se seleccionaron 13 bacterias y se evaluaron realizando pruebas de patogenicidad con larvas de la familia Scarabaeidae, recolectadas de dos propiedades: San Antonio y La Comadreja ubicadas en el municipio de Pasca, Cundinamarca. Los tratamientos que mejor funcionaron fueron C19 y C34 identificados como Serratia proteamaculans con 75% y 69,1% respectivamente, seguido de C24 con 66,6%, y C27 que corresponde a Xenorhabdus sp., causando una mortalidad de 63,8% Los resultados se analizaron con ANOVA y prueba de Tukey.spa
dc.description.tableofcontentsTABLA DE CONTENIDO Resumen 12 Introducción 14 1. OBJETIVOS 16 1.1 Objetivo general 16 1.2 Objetivos específicos 16 2. ANTECEDENTES 17 3. MARCO TEÓRICO 24 3.1 Agricultura en Colombia 24 3.2 Uso de plaguicidas 24 3.2.1 Clasificación de los plaguicidas 25 3.2.2 Problemática de los plaguicidas 27 3.2.3 Efectos secundarios de los plaguicidas 27 3.3 Complejo chisa (Coleóptera: Scarabaeidae) 29 3.3.1 Clasificación taxonómica 29 3.3.2 Generalidades 29 3.3.3 Características morfológicas 29 3.3.4. Biología y ecología 30 3.3.5 Distribución geográfica 31 3.3.6 Importancia económica y daños 32 3.4 Control Biológico 33 3.4.1 Enemigos naturales 33 3.4.2 Entomopatógenos 34 3.5 Enemigos naturales del complejo chisa (Scarabaeidae: Coleóptera) 35 3.5.1 Hongos 35 3.5.2 Nemátodos 36 3.5.3 Rickettsias 36 3.5.4 Virus. 37 3.5.5 Bacterias 37 3.6 Métodos moleculares de identificación 40 3.6.1 PCR 40 3.6.2 Secuenciación por método Sanger 41 4. DISEÑO METODOLÓGICO 42 4.1 Tipo de estudio 42 4.2 Tipo de investigación 42 5. METODOLOGÍA 44 5.1 Fase pre-experimental 44 5.1.1 Fase de campo 44 5.1.2 Monitoreo de larvas 46 5.1.3 Fase de aislamiento de patógenos bacterianos de larvas enfermas 46 5.1.4 Fase de identificación microbiológica 46 5.2 Fase experimental: pruebas de patogenicidad 47 5.2.1 Fase de campo 47 5.2.2 Monitoreo de larvas 49 5.2.3 Identificación de las larvas 49 5.2.4 Desinfección del sustrato (suelo) 50 5.2.5 Activación de cepas de Bacillus sp. cepario UCMC 50 5.3 Fase de montaje de bioensayos 51 5.3.1 Preparación de tratamientos 51 5.3.2 Inoculación de larvas 51 5.4 Identificación molecular 54 5.5 Análisis estadístico 55 6. RESULTADOS 56 6.1 Fase pre-experimental 56 6.1.1 Monitoreo de larvas 56 6.1.2 Fase de aislamiento de patógenos bacterianos de larvas enfermas 57 6.1.3 Fase de identificación microbiológica 62 6.2.1 Fase experimental: pruebas de patogenicidad 63 6.1.5 Activación de cepas de Bacillus sp. cepario UCMC 68 6.2 Análisis pruebas de patogenicidad 71 7. DISCUSIÓN 78 8. CONCLUSIONES 86 RECOMENDACIONES 93 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 9spa
dc.format.extent132p.spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad Colegio Mayor de Cundinamarcaspa
dc.rightsDerechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2019spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/spa
dc.titleAislamiento y selección de bacterias Entomopatógenas como alternativa de control biológico sobre larvas de la familia Scarabaeidae: orden coleópteraspa
dc.typeTrabajo de grado - Pregradospa
dc.description.degreelevelPregradospa
dc.description.degreenameBacteriólogo(a) y Laboratorista Clínicospa
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias de la Saludspa
dc.publisher.placeBogotá D.Cspa
dc.publisher.programBacteriología y Laboratorio Clínicospa
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dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/closedAccessspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0)spa
dc.subject.lembAgricultura
dc.subject.lembMicroclimas
dc.subject.lembOrganismos
dc.subject.proposalScarabaeidaespa
dc.subject.proposalControl biológicospa
dc.subject.proposalEntomopatógenosspa
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fspa
dc.type.coarversionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85spa
dc.type.contentTextspa
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dc.type.redcolhttps://purl.org/redcol/resource_type/TPspa
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/publishedVersionspa
dc.rights.coarhttp://purl.org/coar/access_right/c_14cbspa


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