Mostrar el registro sencillo del ítem

dc.contributor.advisorMuñoz Molina, Liliana Constanza
dc.contributor.authorAcosta Urrego, Edith Yunary
dc.contributor.authorMartínez Lugo, Wendy Gineth
dc.date.accessioned2021-11-22T21:33:33Z
dc.date.available2021-11-22T21:33:33Z
dc.date.issued2018-05-31
dc.identifier.urihttps://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/3702
dc.description.abstractA nivel clínico, la generación de resistencia a través de diferentes estrategias por parte de los microorganismos patógenos es de gran importancia en salud pública, ya que genera menores opciones de tratamiento, mayores tasas de morbimortalidad, y aumento de costos a nivel salud. Dentro de los mecanismos de resistencia que generan patógenos como S. aureus, S. epidermidis, P. aeruginosa y E. coli esta la generación de biopelícula, que lleva a que todos sus factores de virulencia actúen con mayor capacidad, posean mejor adhesión y colonización a superficies y generen de resistencia al tratamiento convencional con antibióticos. En efecto, hoy en día se busca implementar el uso de péptidos antimicrobianos (PAMs) ya que estos son parte de un mecanismo modulador de la inmunidad innata, y uno de estos péptidos es el péptido humano LL-37 del tipo Catelicidina y sus derivados isoméricos, que poseen gran capacidad para inhibir el crecimiento de microrganismos productores de enfermedades de difícil tratamiento, ya que estos presentan gran resistencia a los antibióticos al generar diferentes mecanismos de defensa y resistencia a la acción de los antimicrobianos a través de la expresión de distintas proteínas. Los péptidos presentan diferentes alternativas de acción contra los patógenos, una de las más importantes es la citotoxicidad mediante la formación de poros en la membrana. Es por ello que se evaluó la capacidad de inhibición de biopelícula por parte del péptido LL-37 en sus formas acetilada y enantiómero D ya que hoy en día los péptidos antimicrobianos se han convertido en una medida eficaz ante la resistencia a los antibióticos.spa
dc.description.tableofcontentsRESUMEN 13 INTRODUCCIÓN 15 1. ANTECEDENTES 18 2. MARCO REFERENCIAL 24 2.1 Generalidades 24 2.1.1 S. aureus 24 2.1.2 S. epidermidis 26 2.1.3 E. coli 26 2.1.4 P.aeruginosa 27 2.2 Resistencia e importancia clínica 27 2.3 Biopelícula 29 2.3.1 Etapas de la formación de la biopelicula: 30 2.4 Péptidos antimicrobianos (PAMs )35 2.4.1 Clasificación de los péptidos 36 2.5 Péptido LL-37 38 2.5.1 Síntesis 38 2.5.2 Mecanismo de interacción Péptido-Bacteria 39 2.5 Curvas de Crecimiento 40 3. DISEÑO METODOLOGICO 42 3.1 Escala McFarland 42 3.2 Péptidos antimicrobianos 42 3.3 Reconstitución de péptidos 43 3.4 Curvas de Crecimiento y comparación de los resultados 43 3.5 Porcentaje de tasa de inhibición 44 3.6 Cristal violeta. 44 4. RESULTADOS 46 4.1 Curvas de crecimiento 46 4.2 Cristal violeta, determinación de la formación de Biopelícula 53 5. DISCUSIÓN 55 6. CONCLUSIONES 64 7. RECOMENDACIONES 65 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 66 ANEXOS 78spa
dc.format.extent112p.spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad Colegio Mayor de Cundinamarcaspa
dc.rightsUniversidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2018spa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/spa
dc.titleComparación de la actividad Antibiopelicula de los péptidos Ac-ll37-1 y D-ll37-1 en cepas de Staphylococcus Spp., Escherichia coli y Pseudomonas Aeruginosaspa
dc.typeTrabajo de grado - Pregradospa
dc.description.degreelevelPregradospa
dc.description.degreenameBacteriólogo(a) y Laboratorista Clínicospa
dc.identifier.barcode58433
dc.publisher.facultyFacultad de Ciencias de la Saludspa
dc.publisher.placeBogotá D.Cspa
dc.publisher.programBacteriología y Laboratorio Clínicospa
dc.relation.referencesE. Török ND. Staphylococcal and Streptococcal infections. Medicine (Baltimore) [Internet]. 2005;33(5):97-100. Disponible en: http://www.medicinejournal.co.uk/article/S1357-3039(06)00189- 7/abstractspa
dc.relation.referencesCervantes García E, García González R, Salazar Schettino PM. Características generales del Staphylococcus aureus. Rev Latinoam Patol Clin Med Lab [Internet]. 2014;61(1):28-40. Disponible en: www.medigraphic.com/patologiaclinica%5Cnwww.medigraphic.org.mxspa
dc.relation.referencesWHO. La OMS publica la lista de las bacterias para las que se necesitan urgentemente nuevos antibióticos [Internet]. 2017. Disponible en: http://www.who.int/mediacentre/news/releases/2017/bacteriaantibiotics-needed/es/WHO. La OMS publica la lista de las bacterias para las que se necesitan urgentemente nuevos antibióticos [Internet]. 2017. Disponible en: http://www.who.int/mediacentre/news/releases/2017/bacteriaantibiotics-needed/es/spa
dc.relation.referencesUzcudun IL. Biofilms Bacterianos. Actual SEM. 2011;37:14:44-9.spa
dc.relation.referencesZambrano M, Suarez L. Biofilms bacterianos : sus implicaciones en salud y enfermedad Biofilms : implications in health and disease. Univ Odontol [Internet]. 2006;19-25. Disponible en: http://www.redalyc.org/pdf/2312/231220955004.pdfspa
dc.relation.referencesPletzer D, Coleman SR, Hancock REW. Anti-biofilm peptides as a new weapon in antimicrobial warfare. Curr Opin Microbiol [Internet]. 2016;33:35-40. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.mib.2016.05.016spa
dc.relation.referencesTéllez GA CJ. Péptidos antimicrobianos. Infectio [Internet]. 2010;14(1):55-67. Disponible en: http://www.scielo.org.co/pdf/inf/v14n1/v14n1a07.pdfspa
dc.relation.referencesCastañeda Casimiro J, Ortega roque JA, Marcela A, Aquino-andrade A, Serafín lópez J, Estrada-parra S, et al. Péptidos antimicrobianos: péptidos con múltiples funciones. Alergia, asma e Inmunol [Internet]. 2009;18:16-29. Disponible en: http://www.medigraphic.com/pdfs/alergia/al-2009/al091d.pdfspa
dc.relation.referencesFabisiak A, Murawska N, Fichna J. LL-37: Cathelicidin-related antimicrobial peptide with pleiotropic activity. Pharmacol Reports [Internet]. 2016;68(4):802-8. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.pharep.2016.03.015spa
dc.relation.referencesDuplantier AJ, van Hoek ML. The human cathelicidin antimicrobial peptide LL-37 as a potential treatment for polymicrobial infected wounds. Front Immunol. 2013;4(JUL):1-14.spa
dc.relation.referencesFarinas I, Cowan WM, Jessell TM, Cinty DD, Dudek H, Creenberg ME, et al. Use of the Cell Wall Precursor Lipid II by a Pore-Forming Peptide Antibiotic. 1999;286(December):2361-5. Disponible en: http://www.molgenrug.nl/php/doc/publications/mg0302.pdfspa
dc.relation.referencesMontanaro L, Speziale, Pietro, Davide Campoccia1Ravaioli S, Cangini I, Pietrocola G. Scenery of Staphylococcus implant infections in orthopedics. Future Microbiol [Internet]. 2011;6(11):1329-49. Disponible en: http://www.futuremedicine.com/doi/full/10.2217/fmb.11.117spa
dc.relation.referencesSamuelsen Ø, Haukland HH, Jenssen H, Krämer M, Sandvik K, Ulvatne H, et al. Induced resistance to the antimicrobial peptide lactoferricin B in Staphylococcus aureus. FEBS Lett. 2005;579(16):3421-6spa
dc.relation.referencesKagan BL, Selsted ME, Ganz T, Lehrer RI. Antimicrobial defensin peptides form voltage-dependent ion-permeable channels in planar lipid bilayer membranes. Proc Natl Acad Sci U S A. 1990;87(January):210– 214.spa
dc.relation.referencesWade D, Boman A, Wåhlin B, Drain CM, Andreu D, Boman HG, et al. All- D amino acid-containing channel-forming antibiotic peptides. Proc Natl Acad Sci U S A. 1990;87(12):4761-5spa
dc.relation.referencesVan Regenmortel MH, Muller S. D-peptides as immunogens and diagnostic reagents. Curr Opin Biotechnol [Internet]. agosto de 1998 [citado 1 de mayo de 2017];9(4):377-82. Disponible en: http://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S0958166998800116spa
dc.relation.referencesGómez EC, Tesis. Evaluación de péptidos sintéticos sobre bacterias, levaduras y mohos [internet]. Universidad nacional de Colombia; 2012. Disponible en: http://www.bdigital.unal.edu.co/9147/1/32295622.2012.pdf%0Aspa
dc.relation.referencesDürr UHN, Sudheendra US, Ramamoorthy A. LL-37, the only human member of the cathelicidin family of antimicrobial peptides. Biochim Biophys Acta - Biomembr. 2006;1758(9):1408-25.spa
dc.relation.referencesDean SN, Bishop BM, Van Hoek ML. Susceptibility of Pseudomonas aeruginosa biofilm to alpha-helical peptides: D-enantiomer of LL-37. Front Microbiol. 2011;2(JULY):1-11.spa
dc.relation.referencesDe la Fuente Nuñez C, Reffuveille F, Haney EF, Straus SK, Hancock REW. Broad-Spectrum Anti-biofilm Peptide That Targets a Cellular Stress Response. PLoS Pathog. 2014;10(5).spa
dc.relation.referencesLi G, Xie F, Zhang Y, Bossé JT, Langford PR, Wang C. Role of (p)ppGpp in viability and biofilm formation of Actinobacillus pleuropneumoniae S8. PLoS One. 2015;10(10):1-17.spa
dc.relation.referencesJishage M, Kvint K, Shingler V, Nyström T. Regulation of σ factor competition by the alarmone ppGpp. Genes Dev. 2002;16(10):1260-70.spa
dc.relation.referencesZhao L, Lu W. Mirror image proteins. Curr Opin Chem Biol [Internet]. 2014;22:56-61. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.cbpa.2014.09.019spa
dc.relation.referencesZhao G, Zhong H, Zhang M, Hong Y. Effects of antimicrobial peptides on Staphylococcus aureus growth and biofilm formation in vitro following isolation from implant-associated infections. Int J Clin Exp Med. 2015;8(1):1546-51.spa
dc.relation.referencesHilal Yazici, Mary B. O’Neill, Turgay Kacar, Brandon R. Wilson EEO, Mehmet Sarikaya and CT. Engineered Chimeric Peptides as Antimicrobial Surface Coating Agents toward Infection-Free Implants. ACS Appl Mater Interfaces. 2016;8(8):5070-81.spa
dc.relation.referencesZendejas G, Avalos H, Soto M. Microbiologia general de Staphylococcus aeurus: Generalidades de patogenecidad, metodos de identificacion. Rev Biomed. 2014;25(3):129-43.spa
dc.relation.referencesOrjuela L, Vélez R G V. Bacteriolgía aplicada. Manual de procedimientos. En: Cundinamarca UCM de, editor. Bacteriolgía aplicada Manual de procedimientos. Bogotá; 2014spa
dc.relation.referencesCorrales R, Avila de N ES. Bacteriología: Teoría Y Práctica. Univ Col mayor Cundinamarca. 2013;spa
dc.relation.referencesV S. Temas de Bacteriología y Virología médica. Etiopatogenia microbiológica, Género Staphylococcus. Segunda. Montevideo, Uruguay; 2006. 257-271 p.spa
dc.relation.referencesLi M, Cha DJ, Lai Y, Villaruz AE, Sturdevant DE, Otto M. The antimicrobial peptide-sensing system aps of Staphylococcus aureus. Mol Microbiol. 2007;66(5):1136-47spa
dc.relation.referencesorlak E, Korkut E, Uncu AT, Şener Y. Biofilm formation by Staphylococcus aureus isolates from a dental clinic in Konya, Turkey. J Infect Public Health. 2017;10(6):809-13.spa
dc.relation.referencesKaiser TDL, Pereira EM, dos Santos KRN, Maciel ELN, Schuenck RP, Nunes APF. Modification of the Congo red agar method to detect biofilm production by Staphylococcus epidermidis. Diagn Microbiol Infect Dis. 2013;75(3):235-9.spa
dc.relation.referencesVon Eiff C, Peters G, Heilmann C. Pathogenesis of infections due to coagulase-negative staphylococci. Lancet Infect Dis. 2002;2(11):677-85.spa
dc.relation.referencesNaves PLF. Formación de biopelículas por Escherichia coli y su correlación con factores de virulencia : prevención y actividad de antimicrobianos frente a organismos planctónicos y asociados a biopelículas [Internet]. Universidad Complutense de Madrid; 2010. Disponible en: http://eprints.ucm.es/9780/1/T31422.pdfspa
dc.relation.referencesHufnagel DA, Depas WH, Chapman MR. The Biology of the Escherichia coli Extracellular Matrix. Microbiol Spectr [Internet]. 2015;3(3):1-14. Disponible en: http://www.asmscience.org/content/journal/microbiolspec/10.1128/micro biolspec.MB-0014- 2014%5Cnhttp://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/26185090spa
dc.relation.referencesBeloin C, Roux A, Ghigo J. Escherichia coli biofilms. Curr Top Microbiol Immunol [Internet]. 2010;322:249-89. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2864707/?report=classicspa
dc.relation.referencesOchoa SA, López-Montiel F, Escalona G, Cruz-Córdova A, Dávila LB, López-Martínez B, et al. Caracter??sticas patog??nicas de cepas de Pseudomonas aeruginosa resistentes a carbapen??micos, asociadas con la formaci??n de biopel??culas. Bol Med Hosp Infant Mex. 2013;70(2):138-50.spa
dc.relation.referencesLuján Roca DÁ. Pseudomonas aeruginosa: un adversario peligroso. Acta bioquÃ-mica clÃ-nica Latinoam. 2014;48(4):465-74.spa
dc.relation.referencesOverhage J, Campisano A, Bains M, Torfs ECW, Rehm BHA, Hancock REW. Human host defense peptide LL-37 prevents bacterial biofilm formation. Infect Immun. 2008;76(9):4176-82.spa
dc.relation.referencesOtto M. Staphylococcal biofilms. Curr Top Microbiol Immunol. 2008;322:207-28.spa
dc.relation.referencesRed Nacional de la Vigilancia de la resistencia Bacteriana y de las Infecciones Asociadas al Cuidado de la salud, (Colombia). Estado Del Arte De La Resistencia Bacteriana Y La Vigilancia Epidemiológica De Las Infecciones Asociadas Al Cuidado De La Salud En Colombia. 2010;1-31.spa
dc.relation.referencesTeresa Herrera Mendoza Bac Esp M, Revisión A DE. El papel del biofilm en el proceso infeccioso y la resistencia. Nova. 2004;2(2):71-80.spa
dc.relation.referencesLeal AL, Álvarez CA. Boletín. 2017;(2027).spa
dc.relation.referencesHochbaum AI, Kolodkin-Gal I, Foulston L, Kolter R, Aizenberg J, Losick R. Inhibitory effects of D-amino acids on staphylococcus aureus biofilm development. J Bacteriol. 2011;193(20):5616-22.spa
dc.relation.referencesNazar J. Biofilms bacterianos. Rev Otorrinolaringol Cir Cabeza Cuello. 2009;67:61-72.spa
dc.relation.referencesArcher NK, Mazaitis MJ, Costerton JW, Leid JG, Powers ME, Shirtliff ME. Properties , regulation and roles in human disease Staphylococcus aureus biofilms. 2011;(October):445-59.spa
dc.relation.referencesContreras JJ, Sepúlveda M. Bases moleculares de la infección asociada a implantes ortopédicos. Rev Chil infectología órgano Of la Soc Chil Infectología [Internet]. 2014;31(3):309-22. Disponible en: http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0716- 10182014000300010&lng=es&nrm=iso&tlng=esspa
dc.relation.referencesVila J, Soriano A, Mensa J. Bases moleculares de la adherencia microbiana sobre los materiales protésicos. Papel de las biocapas en las infecciones asociadas a los materiales protésicos. Enferm Infecc Microbiol Clin [Internet]. 2008;26(1):48-55. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1157/13114395spa
dc.relation.referencesPratt LA, Kolter R. Genetic analysis of Escherichia coli biofilm formation: Roles of flagella, motility, chemotaxis and type I pili. Mol Microbiol. 1998;30(2):285-93.spa
dc.relation.referencesRasamiravaka T, Labtani Q, Duez P, El Jaziri M. The formation of biofilms by pseudomonas aeruginosa: A review of the natural and synthetic compounds interfering with control mechanisms. Biomed Res Int. 2015;2015.spa
dc.relation.referencesJoo H-S, Otto M. Mechanisms of resistance to antimicrobial peptides in staphylococci. Biochim Biophys Acta [Internet]. 2015;[Epub ahea(11):3055-61. Disponible en: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/25701233spa
dc.relation.referencesBatoni G, Maisetta G, Esin S. Antimicrobial peptides and their interaction with biofilms of medically relevant bacteria. Biochim Biophys Acta - Biomembr [Internet]. 2016;1858(5):1044-60. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1016/j.bbamem.2015.10.013spa
dc.relation.referencesOrtega-peña S, Franco-cendejas R. Importancia médica del biofilm de Staphylococcus epidermidis en las infecciones de prótesis articular. 2014;spa
dc.relation.referencesCucarella C, Solano C, Valle J. Bap, a Staphylococcus aureus surface protein involved in biofilm formation. J … [Internet]. 2001;183(9):2888- 96. Disponible en: http://jb.asm.org/content/183/9/2888.shortspa
dc.relation.referencesNamvar AE, Bastarahang S, Abbasi N, Ghehi GS, Farhadbakhtiarian S, Arezi P, et al. Clinical characteristics of Staphylococcus epidermidis: a systematic review. GMS Hyg Infect Control [Internet]. 2014;9(3):Doc23. Disponible en: http://www.pubmedcentral.nih.gov/articlerender.fcgi?artid=4184040&too l=pmcentrez&rendertype=abstractspa
dc.relation.referencesSchommer NN, Christner M, Hentschke M, Ruckdeschel K, Aepfelbacher M, Rohde H. Staphylococcus epidermidis uses distinct mechanisms of biofilm formation to interfere with phagocytosis and activation of mouse macrophage-like cells 774A.1. Infect Immun. 2011;79(6):2267-76.spa
dc.relation.referencesKocianova S, Vuong C, Yao Y. Key role of polygamma- DL-glutamic acid in immune evasion and virulence of Staphylococcus epidermidis. J Clin Invest. 2005;115(3):688−694.spa
dc.relation.referencesGhafoor A, Hay ID, Rehm BHA. Role of exopolysaccharides in Pseudomonas aeruginosa biofilm formation and architecture. Appl Environ Microbiol. 2011;77(15):5238-46.spa
dc.relation.referencesPaharik AE, Horswill AR, Roy J, City I. The Staphylococcal Biofilm: Adhesins, regulation, and host response. Microbiol Spectr [Internet]. 2016;4(2):1-48. Disponible en: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4887152/spa
dc.relation.referencesDíaz Caballero a. J, Vivas Reyes R, Puerta L, Ahumedo Monterrosa M, Arévalo Tovar L, Cabrales Salgado R, et al. Biopelículas como expresión del mecanismo de quorum sensing: Una revisión. Av en Periodoncia e Implantol Oral. 2011;23:195-201spa
dc.relation.referencesLoera A, Ramírez F, Avelar F, Guerrero A. Multi-species biofilms : association to survive. Investig Cienc [Internet]. 2012;20(54):49-56. Disponible en: http://www.uaa.mx/investigacion/revista/archivo/revista54/Articulo 7.pdfspa
dc.relation.referencesMulcahy H, Charron-Mazenod L, Lewenza S. Pseudomonas aeruginosa produces an extracellular deoxyribonuclease that is required for utilization of DNA as a nutrient source. Environ Microbiol. 2010;12(6):1621-9.spa
dc.relation.referencesRamos AP, Desgarennes CP. Artículo de revisión Péptidos antimicrobianos: antibióticos naturales de la piel. 2007;57-67.spa
dc.relation.referencesVillarruel R, Huizar R, Corrales M, Sánchez T, Islas A. Péptidos naturales antimicrobianos: escudo esencial de la respuesta ininmune. Investig en Salud [Internet]. 2004;VI(3):170-9. Disponible en: http://www.redalyc.org/html/142/14260306/%0Ahttp://www.redalyc.org/r esumen.oa?id=14260306spa
dc.relation.referencesMcDermott A. Péptidos Catiónicos Antimicrobianos . ¿ Una Futura Opción Terapéutica ? Cationic Antimicrobial Peptides — a Future Therapeutic Option ? Arch Soc Esp Oftalmol. 2007;(82):469-70.spa
dc.relation.referencesNell MJ, Tjabringa GS, Wafelman AR, Verrijk R, Hiemstra PS, Drijfhout JW, et al. Development of novel LL-37 derived antimicrobial peptides with LPS and LTA neutralizing and antimicrobial activities for therapeutic application. Peptides. 2006;27(4):649-60.spa
dc.relation.referencesBandurska K, Berdowska A, Barczy??ska-Felusiak R, Krupa P. Unique features of human cathelicidin LL-37. BioFactors. 2015;41(5):289-300.spa
dc.relation.referencesXu W, Zhu X, Tan T, Li W, Shan A. Design of embedded-hybrid antimicrobial peptides with enhanced cell selectivity and anti-biofilm activity. PLoS One. 2014;9(6):1-13.spa
dc.relation.referencesMadar D, Dekel E, Bren A, Zimmer A, Porat Z, Alon U. Promoter activity dynamics in the lag phase of Escherichia coli. BMC Syst Biol. 2013;7.spa
dc.relation.referencesMicrobiano C. Reproducción y crecimiento Microbiano. 2009;1-23. Disponible en: http://www.ucv.ve/fileadmin/user_upload/facultad_farmacia/catedraMicr o/08_Tema_6_crecimiento.pdfspa
dc.relation.referencesGreulich P, Dolezal J, Scott M, Evans MR, Allen RJ. Predicting the dynamics of bacterial growth inhibition by ribosome-targeting antibiotics. 2017; Disponible en: http://arxiv.org/abs/1701.03702spa
dc.relation.referencesAka ST. Killing efficacy and anti-biofilm activity of synthetic human cationic antimicrobial peptide cathelicidin hCAP-18/LL37 against urinary tract pathogens. J Microbiol Infect Dis [Internet]. 2015;5(1):15-20. Disponible en: http://dergipark.gov.tr/doi/10.5799/ahinjs.02.2015.01.0168spa
dc.relation.referencesNoore J, Noore A, Li B. Cationic antimicrobial peptide ll-37 is effective against both extraand intracellular staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Chemother. 2013;57(3):1283-90.spa
dc.relation.referencesRamírez Santos J, Contreras Ferrat G, Gómez Eichelmann MC. La fase estacionaria en la bacteria Escherichia coli. Rev Latinoam Microbiol. 2005;47(3-4):92-101.spa
dc.relation.referencesArredondo B; VD. Concentración recuento celular y tasa de crecimiento. Métodos y herramientas analíticas en la evaluación la biomasa microalgal. 2007;(January 2007):17-27spa
dc.relation.referencesMergaert P. Role of antimicrobial peptides in controlling symbiotic bacterial populations. Nat Prod Rep [Internet]. 2018;35:336-56. Disponible en: http://xlink.rsc.org/?DOI=C7NP00056Aspa
dc.relation.referencesHeins A-L, Weuster-Botz D. Population heterogeneity in microbial bioprocesses: origin, analysis, mechanisms, and future perspectives. Bioprocess Biosyst Eng. 2018;0(0):0spa
dc.relation.referencesWang L, Keatch R, Zhao Q, Wright JA, Bryant CE, Redmann AL, et al. Influence of type-I fimbriae and fluid shear stress on bacterial behavior and multicellular architecture of early Escherichia coli biofilms at singlecell resolution. Appl Environ Microbiol [Internet]. 2018;(January):AEM.02343-17. Disponible en: http://aem.asm.org/lookup/doi/10.1128/AEM.02343-17spa
dc.relation.referencesCádiz jac. Modelo continuo de flujos metabólicos y regulación génica: aplicaciones [internet]. Vol. 1, universidad de chile facultad de ciencias físicas y matemáticas departamento de ingeniería química y biotecnología m. 2014. Disponible en: http://repositorio.uchile.cl/bitstream/handle/2250/129867/cfcanales_jc.pdf?sequence=1spa
dc.relation.referencesYu G, Baeder D, Regoes R, Rolff J. Predicting Drug Resistance Evolution: Antimicrobial Peptides Vs. Antibiotics. bioRxiv. 2017;138107.spa
dc.relation.referencesDean SN, Bishop BM, Hoek ML Van. Natural and synthetic cathelicidin peptides with anti-microbial and anti-biofilm activity against Staphylococcus aureus Natural and synthetic cathelicidin peptides with anti-microbial and anti-biofilm activity against Staphylococcus aureus. BMC Microbiol [Internet]. 2011;11(1):114. Disponible en: http://www.biomedcentral.com/1471-2180/11/114spa
dc.relation.referencesSieprawska-Lupa M, Mydel P, Krawczyk K, Wójcik K, Puklo M, Lupa B, et al. Degradation of Human Antimicrobial Peptide LL-37 by Staphylococcus aureus -Derived Proteinases. Antimicrob Agents Chemother. 2004;48(12):4673-9.spa
dc.relation.referencesVanegas M, Correa N, Morales A, Martínez A, Rúgeles L, Jiménez F. Resistencia a antibióticos de bacterias aisladas de biopelículas en una planata de alimentos. Rev MVZ Córdoba [Internet]. 2009;14(. Disponi2):1677-83ble en: http://revistas.unicordoba.edu.co/revistamvz/mvz142/v14n2a2.pdfspa
dc.relation.referencesDickinson B. MacConkey Agar. Bd [Internet]. 2014;(July):3. Disponible en: http://www.bd.com/resource.aspx?IDX=8770spa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/closedAccessspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0)spa
dc.subject.lembMicroorganismos
dc.subject.lembSalud pública
dc.subject.lembMorbimortalidad
dc.subject.lembPatógenos
dc.subject.proposalAureusspa
dc.subject.proposalEpidermidisspa
dc.subject.proposalcolispa
dc.subject.proposalP. aeruginosaspa
dc.subject.proposalBiopelículaspa
dc.subject.proposalPéptidos antimicrobianosspa
dc.subject.proposalCurvas de crecimientospa
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fspa
dc.type.coarversionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85spa
dc.type.contentTextspa
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisspa
dc.type.redcolhttps://purl.org/redcol/resource_type/TPspa
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/publishedVersionspa
dc.rights.coarhttp://purl.org/coar/access_right/c_14cbspa


Ficheros en el ítem

Thumbnail
Thumbnail
Thumbnail

Este ítem aparece en la(s) siguiente(s) colección(ones)

Mostrar el registro sencillo del ítem

Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2018
Excepto si se señala otra cosa, la licencia del ítem se describe como Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2018